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品牌 | 其他品牌 | 货号 | GOY-01X0988 |
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规格 | 5×10⁵Cells/T25培养瓶 | 供货周期 | 现货 |
主要用途 | 产品仅供科研使用 | 应用领域 | 化工 |
产品介绍:
名称 大鼠破骨细胞 2.组织来源:骨髓 3.产品规格:5×105cells/T25细胞培养瓶 4.细胞简介: 大鼠破骨细胞分离自骨组织和骨髓;破骨细胞是骨组织中的多核巨细胞,位于骨组织表面的浅凹处。目前一般认为破骨细胞是分离自骨骼外的造血系统,其前体可能属于造血干细胞的前单核细胞。破骨细胞的主要功能是维持骨吸收和骨形成的相对平衡,若失去这种平衡则发生病理性变化。因此多数学者从破骨细胞着手研究破骨细胞的结构、功能探讨骨吸收,形成相互平衡的机制。但破骨细胞是一种终末分化细胞,属于不增殖细胞群,不能增殖和传代,只能进行原代培养且存活时间较短。 5.方法简介: 实验室分离的大鼠破骨细胞采用机械分离法/密度梯度离心法和骨髓单核细胞诱导法制备而来,细胞总量约为5×10?cells/瓶。 6.质量检测: 实验室分离的大鼠破骨细胞经TRAP染色检测,纯度可达30%以上,且不含有HIV-1、HBV、HCV、支原体、细菌、酵母和真菌等。 7.培养信息: 培养基含FBS、生长添加剂、Penicillin、Streptomycin等 产品货号CM-R088 换液频率每2-3天换液一次 生长特性贴壁 细胞形态多核、巨细胞 传代特性属于终末分化细胞;属于不增殖细胞群 消化液0.25%胰蛋白酶 培养条件气相:空气,95%;CO2,5% |
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产品名称 | 大鼠破骨细胞 |
规格 | 5×10⁵Cells/T25培养瓶 |
货号 | GOY-01X0988 |
细胞特点及处理:
产品特点: 1、 使用方便:不需昂贵设备。 2、 可以处理各种细菌菌体,包括新鲜菌液和冰冻菌体。 3、 将蛋白提取的时间缩短至30分钟-1小时。 4、 采用温和的中性裂解组分,保持蛋白活性。 5、 含蛋白稳定剂,提取的蛋白稳定。 6、 紫外检测蛋白浓度时,背景干扰低。 7、 蛋白酶抑制剂抑制了蛋白的降解,蛋白酶抑制剂配方优化。蛋白酶抑制剂混合物包含6种独立的蛋白酶抑制剂;每一种抑制剂可特异性抑制某一种或几种蛋白酶活性。该混合物优化的组成使其可以抑制几乎所有重要的蛋白酶活性,包括丝氨酸蛋白酶、半胱氨酸酸蛋白酶、天冬氨酸蛋白酶等。 8、 本试剂盒中不有EDTA,与金属螯和层析等兼容。 | 细胞处理: 1) 复苏细胞:将含有1mL细胞悬液的冻存管迅速放入37℃水浴中(水面要低于冻存管盖部)摇晃解冻,移入事先准备好的含有4mL培养基的15ml离心管中混合均匀。在1000RPM条件下离心4分钟,弃去上清液,加入1mL培养基后吹匀。然后将所有细胞悬液移入含有5ml培养基的培养瓶中培养过夜。第二天换液并检查细胞密度。 2) 细胞传代:如果细胞密度达80%-90%,即可进行传代培养。 对于贴壁细胞,传代可参考以下方法: 1.弃去培养上清,用不含钙、镁离子的PBS润洗细胞1-2次。 2.加2ml消化液(0.25%Trypsin-0.53mM EDTA)于培养瓶中,置于37℃培养箱中消化1-2分钟,然后在显微镜下观察细胞消化情况,若细胞大部分变圆并脱落,迅速拿回操作台,轻敲几下培养瓶后加少量培养基终止消化。 3.按6-8ml/瓶补加培养基,轻轻打匀后吸出,在1000RPM条件下离心4分钟,弃去上清液,补加1-2mL培养液后吹匀。 4.将细胞悬液按1:2到1:5的比例分到新的含8ml培养基的新皿中或者瓶中。 |
细胞培养技巧:
一、冻存时的注意事项: 1. 在冷冻保存之前,应观察细胞生长是否良好(log phase) 且存活率高,冻存的细胞密度为80 – 90 %最佳 2. 冷冻前检测细胞是否保有其*性质,例如是否有杂细胞或者支原体等。 3. 使用的DMSO 应为试剂级等级,以5~10 ml 小体积分装,4 度避光保存,勿作多次解冻。使用的甘油也应为试剂级等级,以高压蒸汽 灭菌后避光保存。在开启后一年内使用,因长期储存后对细胞会有毒性。 4. 冷冻保存的细胞浓度: 4-1. 正常的成纤维细胞: 1-3x 10^6 cells/ml 4-2 杂交瘤细胞: 1~3 x 10^6 cells/ml,细胞浓度不要太高,某些杂交瘤会因冷冻浓度太高而在解冻24 小时后。 4-3.贴壁肿瘤细胞: 1 x 10^6,依细胞种类而异。腺癌类的细胞解冻后须较高之浓度,而HeLa 只需1-3 x 10^6 cells/ml。 4-4. 悬浮细胞: 5~10 x 10^6 cells/ml, 而淋巴类细胞须至少5 x 10^6 cells/ml。 5. 冷冻保护剂浓度为5 %或10 % DMSO,若是不确定细胞之冷冻条件,在做冷冻保存之同时,亦应作一个backup culture,以防止冷冻失败。
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使用方法:
收到细胞后,请按照以下方法进行操作。 1. 取出25cm2培养瓶,75%酒精消毒,拆下封口膜,放入37℃,5% CO2细胞培养箱中静置6-8小时或者过夜,以稳定细胞状态。 2. 待细胞达到80%汇合时准备进行传代培养。 3. 细胞传代 1) 吸出25cm2培养瓶中的培养基,用PBS清洗细胞一次; 2) 添加0.125%胰蛋白酶消化液约1mL至培养瓶中,37℃温浴3min左右;倒置显微镜下观察,待细胞回缩变圆后吸弃消化液,再加入*培养液终止消化; 3) 用吸管轻轻吹打混匀,按1:2或1:3等适当的比例进行接种传代,然后补充新鲜的*培养基至5mL,放入37℃,5% CO2细胞培养箱中培养; 4) 待细胞*贴壁后,培养观察。之后每隔2-3天更换新鲜的*培养基。 |
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